Primeira detecção de DNA de Toxoplasma gondii em caramujos gigantes africanos, Achatina fulica (Bowdich, 1822)

Autores

DOI:

https://doi.org/10.17696/2318-3691.31.01.2025.264

Palavras-chave:

Toxoplasma. Fezes. Molusco Contagioso. DNA

Resumo

Introdução: A contaminação ambiental por oocistos de Toxoplasma gondii representa risco à saúde humana e animal, especialmente em áreas urbanas com saneamento precário. O caramujo africano gigante (Achatina fulica), por viver em contato direto com o solo e consumir vegetais, pode atuar como vetor mecânico de oocistos do parasito. Objetivos: Investigar a presença de DNA de Sarcocystidae em fezes de A. fulica coletados em Feira de Santana, Bahia, Brasil. Métodos: Observações epidemiológicas foram realizadas nos locais de coleta, e o Instituto Nacional de Meteorologia forneceu as variáveis climáticas. No laboratório os animais foram lavados em água corrente e mensurados, colocados em frascos plásticos individuais e alimentados com água e repolho diariamente até que as amostras de fezes fossem processadas. As folhas de repolho foram submetidas a um teste parasitológico para detectar a presença de protozoários e helmintos. As amostras de fezes foram ressuspensas em igual volume de etanol PA e congeladas até a extração de DNA, realizada com um kit comercial. Nested PCR (nPCRs) foi realizada para detectar fragmentos de DNA ribossomal de protozoários da família Sarcocystidae. Resultados: Das 220 amostras submetidas à nPCR, 58 (26,36%; IC95%: 20,99-32,57) amostras amplificaram o fragmento esperado de 290 pares de bases, sendo em seguida submetidas à RFLP. Destas, 41 (70,69%; IC95%: 57,92-80,81) amostras foram clivadas pelas enzimas de restrição utilizadas neste estudo, com perfil compatível com T. gondii. Conclusão: Este é o primeiro relato da presença de DNA compatível com T. gondii em A. fulica.

Palavras-chave: Toxoplasma. Fezes. Molusco Contagioso. DNA.

Referências

1. Dubey JP. The history and life cycle of Toxoplasma gondii. In: Weiss LM, Kim K. Toxoplasma gondii. Third Edition. Academic Press; 2020. p. 1-19. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-815041-2.00001-3.

2. Zhu S, VanWormer E, Martínez-López B, Bahia-Oliveira LMG, DaMatta RA, Rodrigues PS, et al. Quantitative risk assessment of oocyst versus bradyzoite foodborne transmission of Toxoplasma gondii in Brazil. Pathogens. 2023;12(7):870. https://doi.org/10.3390/pathogens12070870.

3. Castillo-Cuenca JC, Almería S, Calero-Bernal R, Fernández-Escobar M, Fraga J, Entrena-García A, et al. Seroprevalence and genetic characterization of Toxoplasma gondii in domestic pigs intended for human consumption in Cuba. Zoonoses Public Health. 2023;70(2):125-33. doi: 10.1111/zph.13010.

4. Santos BM dos, Ribeiro EL dos S, Lima M de S. Toxoplasmose gestacional: um estudo epidemiológico. Rev JRG Estud Acad. 2023;6(13):674-87. DOI: 10.5281/zenodo.802568.

5. Dubey JP. Toxoplasmosis of animals and humans. 3. ed. Boca Raton: CRC Press; 2022 [cited 2024 Jul 7]. 542 p. Avaliable from: https://shorturl.at/UcH0n.

6. Dubey JP, Cerqueira-Cézar CK, Murata FHA, Kwok OCH, Yang YR, Su C. All about toxoplasmosis in cats: the last decade. Vet Parasitol. 2020;283:109145. doi: 10.1016/j.vetpar.2020.109145.

7. Pinto-Ferreira F, Paschoal ATP, Pasquali AKS, Bernardes JC, Caldart ET, Freire RL, et al. Techniques for inactivating Toxoplasma gondii oocysts: a systematic review. Braz J Vet Parasitol 2021;30(2):e026420.

8. López Ureña NM, Chaudhry U, Calero Bernal R, Cano Alsua S, Messina D, Evangelista F, et al. Contamination of Soil, Water, Fresh Produce, and Bivalve Mollusks with Toxoplasma gondii Oocysts: a systematic review. Microorganisms. 2022;10(3):517. doi: 10.3390/microorganisms10030517.

9. Fischer ML, Gang J de. A problemática do Caramujo Gigante Africano Invasor inserida nos debates entre Saúde Pública, Malacologia e Bioética Ambiental: uma agenda dos objetivos do desenvolvimento sustentável. Rev Iberoam Bioét. 2020;(13):1-17. https://doi.org/10.14422/rib.i13.y2020.003.

10. Santos FA dos, Santos LS dos, Silva MDF da, Schork G. Ocorrência e distribuição de Achatina fulica em zona urbana de Penedo, Alagoas, Brasil. Eng Sanit Ambient. 2022;27(3):465-75. https://doi.org/10.1590/S1413-415220200415.

11. Souza MG de, Lachi AMC, Albuquerque AR da C. Precariety of basic sanitation and the presence of the african snail (Achatina Fulica Bowdich, 1822) in the city of Manaus / AM-Brasil. Rev Nac Gerenciamento Cid 2020;8(67):117-129. DOI:10.17271/2318847286720202724.

12. Santos EMR. Collection points of Achatina fulica in Feira de Santana, Bahia. 2012-2013. [cited 2025 Jul 01]. Avaliable from: https://www.researchgate.net/publication/392870915_Collection_points_of_Achatina_fulica_in_Feira_de_Santana_Bahia_2012-2013.

13 Instituto Nacional de Metereologia. [cited 2024 Aug 13]. Brasília, DF: INMET. Available from: https://portal.inmet.gov.br/

14 . Tomiyama K. Age Dependency of sexual role and role and reproductive ecology in a simultaneously hermaphroditic Land Snail, Achatina fulica (Stylommatophora : Achatinidae). Venus J Malacol Soc Jpn. 2002;60(4):273-83. [cited 2024 Aug 20]. Available from: https://www.jstage.jst.go.jp/article/venus/60/4/60_KJ00004345218/_pdf/-char/en

15. Montresor A. Bench Aids for the diagnosis of intestinal parasites. 2. ed. Genebra: World Health Organization; 2020. 32 p. [cited 2024 Oct 15]. Avaliable from: https://www.who.int/publications/i/item/9789241515344

16. Dardona Z, Al Hindi A, Hafidi M, Boumezzough A, Boussaa S. Occurrence of Toxoplasma gondii on Raw Leafy Vegetables in Gaza, Palestine. J Food Prot. 2021;84(2):255-61. doi: 10.4315/JFP-20-160

17. Silva RC da, Su C, Langoni H. First identification of Sarcocystis tenella (Railliet, 1886) Moulé, 1886 (Protozoa: Apicomplexa) by PCR in naturally infected sheep from Brazil. Vet Parasitol. 2009;165(3-4):332-6. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2009.07.016

18. CDC CFDC. Epi InfoTM. 2022 [cited 2024 Oct 13]. Available from: https://www.cdc.gov/epiinfo/index.html

19. Tsushima E. Interpreting results from statistical hypothesis testing: understanding the appropriate P-value. Phys Ther Res. 2022;25(2):49-55. doi: 10.1298/ptr.R0019

20. Zhu S, Camp L, Patel A, VanWormer E, Shapiro K. High prevalence and diversity of Toxoplasma gondii DNA in feral cat feces from coastal California. PLoS Negl Trop Dis. 2023;17(12):e0011829. doi: 10.1371/journal.pntd.0011829

21. Kakakhel MA, Wu F, Anwar Z, Saif I, Akbar NU, Gul N, et al. The presence of Toxoplasma gondii in soil, their transmission, and their influence on the small ruminants and human population: a review. Microb Pathog. 2021;158:104850. doi: 10.1016/j.micpath.2021.104850

22. Berrouch S, Escotte-Binet S, Harrak R, Huguenin A, Flori P, Favennec L, et al. Detection methods and prevalence of transmission stages of Toxoplasma gondii, Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. in fresh vegetables: a review. Parasitology. 2020;147(5):516-32. doi: 10.1017/S0031182020000086

Downloads

Publicado

07-08-2025

Como Citar

Primeira detecção de DNA de Toxoplasma gondii em caramujos gigantes africanos, Achatina fulica (Bowdich, 1822). (2025). Arquivos De Ciências Da Saúde, 31(01), 1-4. https://doi.org/10.17696/2318-3691.31.01.2025.264